T/SXZYC 008-2023
Sophora flavescens 種子の品質基準 (英語版)

規格番号

T/SXZYC 008-2023

言語

中国語版, 英語で利用可能

制定年

2023

出版団体

Group Standards of the People's Republic of China

最新版

T/SXZYC 008-2023

範囲

サンプル採取（トレーサビリティ情報を含む）、基本的な品質要件、品質等級基準、検査方法、包装材料、保管条件、保管期間などの重要な技術内容の説明が含まれます。 1 Sophora flavescens 種子の検査方法に関する研究 1.1 試験材料 2013 年 4 月から 2015 年 1 月までに Sophora flavescens 種子 18 コピーを収集し、その内訳は河北省産 9 コピー、安徽省産 3 コピー、中国東北部産 2 コピー、山西省産 2 コピー、内陸産 2 コピーであった。 モンゴル（表1）。 表 1 Sophora flavescens 種子サンプルの供給源 サンプル番号 ソース収集時間 サンプル番号 ソース収集時間 K-1 河北承徳 2014.4 K-10 安徽省 2014.4 K-2 河北安国 2014.4 K-11 内モンゴル 2013.4 K-3 河北安国 2014.4 K- 12山西省 2013.4 K-4、安徽亳州 2014.4 K-13 東北地方 2013.4 K-5 東北地方 2014.4 K-1 14 河北承徳 2013.4 K-6 成徳 2014.4 K-15 山西省長志 2014.9 K-7 河北安国 2014.4 K-16 内モンゴル自治区 2015。 1K - 8 河北安国 2014.4 K-17 河北安国 2015.1 K-9 安徽亳州 2014.4 K-18 河北 2015.1 1.2 試験方法 1.2.1 素手で半分にする方法を使用してサンプルを切断し、検査のためにサンプルを直接採取します。 手順は次のとおりです。 種子サンプルを滑らかな表面に注ぎ、スクレーパーを使用してサンプルを垂直方向、次に水平方向に混合し、混合を 4 回繰り返します。 次に、種を2つの部分に分け、それぞれの部分をさらに半分に分割して4つの部分を取得します。 次に、各セクションを再度 2 つに分割し、最終的に 8 つのセクションになります。 織り交ぜた部分を結合して保持し、残りの 4 つの部分を削除します。 種子の品質が検査に提出されたサンプルの品質と一致するまで、上記のサンプリング手順を繰り返します。 2.1.2. 透明度分析の手順は次のとおりです: (1) 検査に提出されたサンプルの総重量を量り、M として記録します。 検査のために提出されたサンプルに、土の塊、石、または小さな種子が混在した大きな種子などの重度の汚染物質が含まれているかどうかを確認します。 重い混合物がある場合は、重い混合物を取り出して重量を量り、m として記録します。 次に、重い混合物から他の植物の種子と不純物を分離し、他の植物の種子の質量を m1 として記録し、不純物の質量を m2 として記録します。 (2) 重度の夾雑物を選別して検査に提出した試料から、試料分割板を用いて全量（約2,500粒分）を採取し、試料質量を秤量する。 サンプルを分析ベンチに注ぎ、きれいな種子、他の植物の種子、不純物を分離します。 分別の際には篩を使用することもでき、篩では分別しにくい物質は手作業で分別します。 次に、分離したパーツを対応するコンテナに置きます。 (3) サンプル中の純種子、他の植物種子および不純物の含有量をそれぞれ計算し、それぞれ P1、OS1、および I1 として記録します。 計算時の被除数は 3 つの成分の質量の合計です。 3 つの成分の質量の合計が元のサンプルの 5% を超えることはできません。 各成分の含有量の計算式は以下の通りです。 正味種子（P2）：P2（%）＝P1×（Mm）/M その他植物種子（OS2）：OS2（%）＝OS1×（Mm） /M + m1/M ×100 不純物 (I2): I2 (%) = I1 × (Mm)/M + m2/M × 100 最終チェックは次のようになります: (P2 + OS2 + I2) = 100.00%。 四捨五入: まず、各成分の合計が 100.0% であるかどうかを確認します。 0.05% 未満の誤差は無視できます。 合計が 99.9% または 100.1% の場合は、最小値から 0.1% を加算または減算します。 丸め値が 0.1% より大きい場合は、計算にエラーがないかチェックする必要があります。 1.2.3 重量測定材料は、K-3、K-13、および K-14 の清浄な種子サンプルです。 私の国の作物種子検査規則(GB/T 3543.1~3543.7-1995)は、種子の千粒重を測定する方法には百粒法と千粒法があると規定しています。 この試験では、上記 2 つの方法を使用して、カッシア種子の千粒重量を測定します (1) 百粒法: J-1、J-5、J-7、および J-8 をきれいに採取します。 種子を百粒法で測定し、千粒の重さは2倍になります。 つまり、各サンプルからランダムに 100 個の種子を数え、8 回繰り返し、別々に重量を量ります。 次に、再度 100 個の種子を数え、8 回繰り返し、別々に重量を量ります。 計量結果は0.001gまで正確です。 百粒度法ごとに平均、標準偏差、変動係数を計算します。 (2) 千粒法：J-1、J-5、J-7、J-8 の清浄な種子を採取し、千粒法により各サンプルの千粒重量を 2 回測定します。 つまり、各サンプルから 500 個の種子をランダムに数えて 2 回繰り返し、別々に重量を量ります。 次に、再度 500 個の種子を数えて 2 回繰り返し、別々に重量を量ります。 計量結果は0.001gまで正確です。 各千粒法の平均値と繰り返し間の差を計算します。 1.2.4 水分測定試験材料は、K-1 および K-4 のクリーンシードです。 2.1.2.4 水分測定は「作物種子検査規程」に基づいており、種子水分の測定方法には高温恒温乾燥法と低温恒温乾燥法があります。 この実験では、上記の 2 つの方法を使用して、槐の種子の水分含量を測定します。 高温恒温乾燥の手順は次のとおりです。 (1) J-5 と J-7 の清浄な種子 25g をそれぞれ採取し、小型粉砕機で 15 秒間粉砕します（粉砕粒度 90% 以上の成分） 3mmメッシュを通過可能））。 (2) 清潔なアルミニウム箱を 6 つ用意し、130°C のオーブンに入れて 1 時間予備乾燥します。 1時間後、アルミ箱を取り出し、乾燥機に入れて30分間冷まして乾燥させます。 冷却後、アルミ箱の重さを量り、粉砕した種子4.5～5.0gを加えて総重量を量ります。 各サンプルを 3 回繰り返しました。 (3) アルミ箱を 130℃のオーブンに入れ、0.5 時間ごとに取り出してデシケーターに入れて冷却し、合計乾燥時間が 3.5 時間になるまで秤量します。 (4) 各乾燥後に測定された種子の水分を計算します。 すべての計量結果は 0.001g まで正確です。 同じサンプルの反復間の差は 0.2% を超えることはできません。 低温恒温乾燥法は高温恒温乾燥と手順は同じですが、種子の乾燥温度が103℃、乾燥時間が17時間である点が異なります。 1.2.5 真贋識別: K-15 種子を 400 個採取し、ノギスで長さと幅を測定します。 次に、種子を実体顕微鏡で観察し、種子の形態学的特徴を記録および写真撮影した。 1.2.6 発芽試験 槐の硬さの除去方法、適切な発芽床、適切な発芽温度、発芽試験の最初と最後の計数時間、正常苗と異常苗の評価基準を検討した。 硬い種子を除去する研究: 手順は次のとおりです: (1) 同じサイズの K-12 種子を 800 粒、対照群の種子を 200 粒ずつ採取します。 （２）対照群は蒸留水で３回洗浄し、実験群は濃硫酸にそれぞれ４０分、５０分、６０分浸漬した。 (3) 硫酸を注ぎ出し、水道水で白い泡がなくなるまで洗い流し、その後蒸留水で 3 回洗い流します。 （４）対照群および各処理の種子を清潔なシャーレに置き、蒸留水を加えて１８時間浸漬する。 紙の発芽試験を行います。 50カプセル/繰り返しを4回繰り返します。 毎日、発芽した種子の数を数えます。 発芽床の選択: 均一なサイズの K-15 種子を 1,200 個採取し、硬い種子を取り除き、砂、砂、紙、およびロール紙の方法を使用して発芽試験を実施します。 操作は2.1.2.6と同様です。 毎日、発芽した種子の数を数え、本葉の成長を発芽として記録した。 発芽温度の選択: 均一なサイズの K-15 種子を 1,200 個採取し、硬さを取り除きます。 発芽試験はロール間発芽法を用いて行い、15℃、20℃、25℃、30℃の連続光条件下で栽培した。 各レベルは 3 回繰り返されます (100 グレイン/繰り返し、50 グレイン/繰り返し)。 発芽した種子の数を毎日数え、発芽の基準は苗の主要構造の外観であった。 発芽後、各複製から均一に成長した苗木 25 本を選択し、新鮮重量を測定しました。 発芽試験のカウント時間: K-13 と K-15 の種子をそれぞれ 400 個ずつ取り、硬い種子を取り除きます。 発芽はロール紙の間で行い、30℃の連続光下で培養した。 各サンプルを 100 グレイン/繰り返しおよび 50 グレイン/繰り返しで 4 回繰り返しました。 毎日、発芽した種子の数を数えます。 苗の評価基準：発芽計数時間試験後、苗の形態を観察し、「GB/T3543.1～3543.7-1995 作物種子検査規則実施指針」に基づいて苗の形態の正常・異常を判定する。 1.2.7 生残判定に関する検討 Sophora flavescens 種子の生残判定のためのテトラゾリウム染色方法には、前湿潤法、前染色処理、テトラゾリウム溶液濃度と染色時間、染色形態識別基準が含まれる。 プレ湿潤法：K-13、K-14、K-15の種子を各400粒ずつ取り、硬さを取り除いて15cmシャーレに入れ、適量の蒸留水を加えて浸漬します。 4時間ごとに種子の吸水と種皮の軟化を観察します。 染色の前処理：槐の種子には胚乳がなく、種皮が剥がれやすいです。 子葉は太くて2枚あり、中央に胚、胚軸、幼根があります。 染色する前に、種皮を剥がし、2つの子葉をばらばらにし、胚、胚軸、幼根を含む子葉を1つ取り出して染色します。 テトラゾール溶液の濃度と染色時間：K-15種子を200個取り、硬度を取り除き、水に浸して24時間予湿し、前染色処理を行います。 清潔な9cmシャーレを4枚用意し、それぞれに50粒の種子を入れ、0.5%または1.0%のTTC溶液を注ぎます。 各処理を２回繰り返した。 30℃の暗所で染色します。 8時間の染色後、種子はわずかに赤くなりましたが、その後、2時間ごとに0.5%および1.0%のTTC溶液からランダムに20個の種子を採取し、顕微鏡で写真を撮影し、染色後14時間まで染色の程度を記録しました。 染色形態の同定：K-13、K-14の種子を各400粒ずつ採取し、硬さを取り除き、水に浸して24時間予湿し、前染色処理を行います。 9 cm シャーレに 50 粒ずつ入れ、1.0% TTC 溶液を注ぎ、30℃、暗所で 14 時間染色します。 染色後、種子の表面に残った染色液を注ぎ出して洗浄し、種子を実体顕微鏡下に置き、染色形態を観察し、生存可能な種子の形態と非生存可能な種子の形態を決定するために分類し、写真を撮影します。 。 暫定的な染色形態学的識別標準に基づいて、K-13 および K-14 種子の生存率を決定します。 K-1、K-4、および K-15 種子をランダムに 400 個採取し、上記の方法を使用して生存率を測定します。 同時に、K-1、K-4、K-13、K-14、K-15の種子を各400粒ずつ採取し、砂中で発芽試験を行い、発芽率を算出します。 測定された生存率と発芽率の相関関係を分析して、染色形態学的識別基準が正確であるかどうかを判断します。 1.3 結果と分析 1.3.1 透明度分析 試験材料は K-1、K-3、K-4、K-13、K-14、および K-15 種子サンプルで、最低純度は 93.39%、最高純度は 93.39% です。 純度は96.87%です(表2)。 表 2 Sophora flavescens サンプルの透明度 サンプル番号 透明度 サンプル番号 透明度 K-1 98.75% K-13 94.98% K-3 93.39% K-14 94.31% K-4 96.74% K-15 96.87% 1.3.2 千粒重量 100 種子法を使用して Sophora flavescens の種子の重量を測定すると、8 回の繰り返しの変動係数が 4.0 を超える場合があります (表 3)。 反復間の変動係数が大きく、結果の信頼性が低く、千粒重みの計算には使用できません。 表 3 100 種子法による Sophora flavescens 種子の 1000 種子重量の測定 サンプル数 平均測定数 (g) 標準偏差 (S) 変動係数 (CV) 変動係数が 4.0 未満かどうか-シード重量(g) K-3 1回目 3.97  0.22  5.5  No 39.75  2回目 3.94  0.18  4.6  No 39.44  K-13 1回目 4.49  0.17  3.8  はい 44.94  2 回目 4.43  0.20 4.3   いいえ 44.26  K-14 1 回目 4.69  0.10  2.2  はい 46.88  2 回目4.70  0.28  6.0  いいえ 47.04  注: 表内の 1 つの測定値は適用を指します 種子の 1000 粒重量は 100 種子法によって 1 回測定されます。 つまり、毎回 100 粒の種子が数えられ、その数が繰り返されます。 回して重さを量りました。 Sophora flavescens の種子の重量を千粒法で測定したところ、平均値に対する 2 回の繰り返しの差の割合は 5% 未満でした (表 4 を参照)。 結果は信頼性が高く、千粒重の計算に使用できます。 表 4  千種子法による Sophora flavescens 種子の千種子重量の測定 サンプル番号 平均測定回数 (g) 繰り返し/平均の差 繰り返し/平均の差 繰り返し/平均の差が大きいかどうか5%未満 千粒重(g) K-3 1回目 20.19 3.1%は 40.38 2回目 20.03 0.5%は 40.06 K-13 1回目 22.35 0.0%は 44.70 2回目 22.29 3.7%は44.58 K-14 1 回目 23.71 4.2% は 47.42 2 回目 23.26 1.8% は 46.52 注：表中 1 回測定とは、千種子法を用いて種子の千粒重量を 1 回測定することを指します。 毎回 500 個の種子を数え、その数え方を 2 回繰り返して重さを量ります。 1.3.3 水分測定 一定の高温で乾燥する場合、乾燥時間が長くなるにつれて、測定された水分含量は徐々に増加し、1.0 時間の乾燥後、測定された種子の水分含量は変化しなくなります。 表 5 を追加します。 0.5 時間の乾燥と 1.0 時間の乾燥の間には大きな差があります。 1.0 時間の乾燥と 1.5 時間および 2.0 時間の乾燥の間には大きな差はありません。 したがって、一定の高温で 1.0 時間乾燥させると、Sophora flavescens の種子の水分含有量を測定できます。 表5  130℃乾燥による槐の種子の水分測定 乾燥時間(h) 水分測定値(%) K-1 K-4 0.5 11.43±0.02b 10.38±0.01b 1.0 11.95±0.11a 10.66± 0.04a 1.5 12.00±0.04a 10.72±0.01a 2.0 12.01±0.02a 10.73±0.03a 要約すると、Sophora flavescens 種子の水分含量は、1 時間の高温一定温度乾燥を使用して測定されました。 1.3.4 真贋識別は、真贋識別に種子出現形態法を使用します。 楕円形または倒卵形の球形、長さ3.8～6.4mm、幅3.1～4.8mm、表面は淡褐色または黄褐色、滑らかでわずかに光沢がある。 上部は鈍く、下端は尖っており、短い肘頭の形で腹面に向かって突き出ており、背中の中央に縦の隆起が見られます（あまり目立たないこともあります）、そして暗褐色の線状の突起があります腹面には種子の隆起が見られ、上部の点状のカラザまで伸び、下端近くの穴状の門につながっています。 子葉は2枚あり、厚い。 1.3.5 硬度を除去するための発芽試験方法: 硫酸に浸漬すると、Sophora flavescens の種子から効果的に硬度を除去できます。 図 3-3 を参照してください。 処理グループの種子の約 50% が 2 日目に紙上で発芽しましたが、対照グループの種子の発芽率は 0 に近かったです。 6日目には、処理グループの発芽率は約60％に達しましたが、対照グループの発芽率はわずか20％でした。 治療グループの各レベルでの治療効果にも差があります。 40 分処理した種子の発芽率は、50 分処理した種子の発芽率よりも常に低かった。 50 分と 60 分処理した種子の発芽率は、最初の 4 日間は同様であり、発芽率は50 分間処理した種子の発芽率は 5 日目と 6 日目で同様でした。 新しい種子はまだ発芽しますが、60 分間処理した種子の発芽率は基本的に変化しません。 そこで、槐の種子の硬さを取り除くために、分析的に純粋な硫酸に50分間浸す方法が使用されます。 発芽床の選択: Sophora flavescens の種子は、発芽床が異なれば発芽率も異なります。 紙上、紙ロール間、および砂内での発芽率はすべて 90% 以上であり、紙ロール間および紙上の発芽率は砂内よりも大幅に高かった。 異なる発芽床における Sophora flavescens の苗の生育条件は異なります。 生育状態は紙間および砂中で良好で、苗の地上部、地下部ともに十分に発達しており、紙上で発芽した苗の主根は伸びず、側根の発達は遅く、根の発達は遅い。 全体的に根系が短く生育が悪い。 異なる発芽床における槐の種子の発芽率と苗の成長を考慮すると、槐の種子に最適な発芽床は紙ロール室であることが判明した。 発芽温度の選択: Sophora flavescens の種子は、温度条件が異なると発芽の開始時間と終了時間が異なります。 Sophora flavescensは気温が上昇するにつれて発芽周期が徐々に短くなり、発芽開始時期が早まります。 このうち、15℃の条件では苗の生育が遅く、20℃、25℃、25℃の条件では13日目に発芽し始め、27日目まで発芽し続けた種子もあった。 30℃では5日目から7日目に発芽し始め、15日目以降は基本的に新たな発芽は見られなくなります。 異なる温度条件下での Sophora flavescens 種子の発芽率、発芽指数、活力指数は大きく異なります (表 6 を参照)。 20℃、25℃、30℃での発芽率は 15℃よりも大幅に高く、30℃以下の発芽指数はと活力指数は他の温度に比べて著しく高く、次いで 25℃でした。 発芽サイクルと組み合わせると、Sophora flavescens の最適発芽温度は 30°C であると決定されました。 表 6 各種温度条件下における槐の発芽率、発芽指数、活力指数 温度 (℃) 発芽率 (%) 発芽指数 活力指数 15 88.67±0.02c 5.16±0.07d 23.57±0.63d 20 95.67±0.03a 9.29 ±0.37 c 11.24±0.54c 25 92.33±0.03ab 11.91±0.45b 14.58±0.48b 30 98.00±0.00a 16.22±0.06a 19.21±0.84a 発芽試験カウント時間：7日目に発芽数が最も早く増加、11日後 発芽種子の数は基本的に変化しませんでした。 7 日目を最初のカウント時間として決定し、11 日目を最後のカウント時間として決定します。 苗の評価基準： Sophora flavescens の苗は、根が真っ直ぐで、茎が細く、本葉が小さい、土持ちの子葉苗です。 槐苗の評価基準は以下のとおりである。 正常苗：Ａ 完苗：子葉が無傷で、主根、側根がよく発達し、茎先端が正常である。 B 軽微な欠陥のある苗: 子葉は部分的に損傷していますが、カビや腐敗は引き起こしません。 C 二次感染苗：完全な苗およびわずかな欠陥を有する苗に関する上記の要件を満たしており、外部の病原性細菌によって感染されています。 異常苗： A. 傷んだ苗： B. 変形苗： 苗の主根が短く小さく、組織が損傷し、根の先端がなく、側根が少なくて小さい、根が丸まっている球状で主根と側根の区別がつかない、苗茎の先端が傷んで生育できなくなる。 C. カビが生えた苗または腐った苗: 苗は種子内のバクテリアによってカビが生えたり腐ったりします。 1.3.6 生存率判定のためのプレウェット法: Sophora flavescens の種子は、水に浸して 18 ～ 24 時間プレウェットした後に完全に活性化できます。 染色前処理：染色前に種皮を剥がし、子葉を1枚取り除き、幼根、胚、胚軸を含む種子の半分を残します。 テトラゾリウム溶液の濃度と染色時間: 染色時間が長くなるにつれて、染色は徐々に濃くなり、高濃度の染色溶液はより濃く染まります (図 3-9 を参照)。 14 時間の染色後、0.5% テトラゾール溶液ではいくつかの種子はまだ軽く染色されましたが、1.0% テトラゾール溶液ではすべての種子が赤色に染色されました。 したがって、テトラゾリウム溶液の染色濃度は１．０％、染色時間は１４ｈと決定された。 染色形態の同定：ダイズ種子のテトラゾリウム染色形態同定法を参考にすると、Sophora flavescens 種子の染色形態は以下の 6 種類に分類されます（図 3-10 参照）。 子葉のごく一部は染色されていません (図 3-10b)、すべては染色されていません (図 3-10c)、胚は染色されていません (図 3-10d)、胚と胚軸幼根は染色されていません (図 3-10e) )、子葉の 3 分の 2 以上が染色されていません (図 3-10f)。 Sophora flavescens の種子は子葉が厚いため、子葉の非染色範囲の最大許容範囲を 3 分の 2 に設定します。 図 10 Sophora flavescens 種子のテトラゾリウム染色形態 染色形態の判定基準を表 7 に示します。 表 7 Sophora flavescens の種子の生存能力を識別するための基準。 染色形態。 生存能力の有無? すべて染色。 子葉は 3 分の 2 未満が染色されていない。 子葉は 3 分の 2 を超えて染色されていない。 細菌なし。 生存率と発芽の間の相関係数すべての未染色 Sophora flavescens 種子の割合は 0.999、R2 値は 0.982 で、図 3-11 に示すように、2 つの間の有意な相関関係を示しています。 したがって、上記の活力測定方法および識別基準は正確で信頼できるものである。 2 Sophora flavescens 種子の品質等級基準に関する研究 2.1 試験材料は 1.3 と同じです。 2.2 試験方法：種子サンプルの純度、千粒重、水分および発芽率を種子の品質分類の指標として選択し、サンプル指標を2.1で導出された方法を使用して測定する。 種子の品質は、平均プラスまたはマイナス標準偏差法を使用して等級付けされました。 発芽率、千粒重、透明度の3指標は、1級、2級は平均値＋標準偏差の1倍を分割点とし、2級、3級は平均値を分割点とし、平均から標準偏差の 1 倍を引いた値が 3 として使用されます。 レベル シードの下限点です。 水分については、レベル 1 と 2 では平均値から標準偏差の 1 倍を引いた値が分割点として使用され、レベル 2 と 3 では平均値が分割点として使用され、平均値と標準偏差の 1 倍を加算した値がレベル 1 と 2 の分割点として使用されます。 レベル3シードの下限ポイント。 カッシアの種子は3つのグレードに分けられます。 2.3 結果と分析 2.3.1 種子品質指標の決定 Sophora flavescens 種子の純度範囲は 88.85%~98.84%、平均値は 96.16%であり、そのうち 1 つの種子の純度は 90.00% 未満であり、残りの 17 個の種子の透明度は 90.00% を超えています (表 8)。 表 8 Sophora flavescens 種子サンプルの透明度 サンプル番号 透明度の増加と損失の差 サンプル番号 透明度の増加と損失の差 K-1 98.75% 0.0% K-10 96.27% -0.1% K-2 96.65% -0.1% K-11 95.72% -0.1% K-3 93.39% 0.1% K-12 96.23% -0.1% K-4 96.74% 0.0% K-13 94.98% 0.1% K-5 88.85% 0.2% K-14 94.31% 0.0% K- 6 98.84% 0.3% K-15 96.87% 0.0% K-7 97.75% -0.2% K-16 98.38% -0.1% K-8 97.41% 0.0% K-17 95.75% -0.2% K-9 98.34% -0.1 % K -18 95.70% 0.0% Sophora flavescens 種子の千粒重量は 34.67 g から 62.53 g まで変化し、平均値は 47.35 g です。 千粒重量が 40.00 g 未満の種子が 3 個、千粒重量が 40.00 g ～ 50.00 g の種子が 7 個、千粒重量が 50.00 g ～の種子が 7 個あります60.00 g、および 60.00 g を超える 1,000 個の種子の重量。 (表 9)。 表 9 Sophora flavescens 種子サンプルの千粒重量 サンプル番号 千粒重量 (g) 反復間の差/平均 サンプル番号 千粒の種子重量 (g) 反復間の差異/平均 K-1 52.76 1.4% K-10 39.66 -0.3% K-2 34.67 - 1.0% K-11 47.75 1.7% K-3 40.06 0.5% K-12 51.09 3.8% K-4 50.92 1.1% K-13 44.57 3.7% K-5 51.04 1.6% K-14 46.52 1.8% K-6 41.81 -0.7 % K-15 45.11 -0.8% K-7 52.69 4.7% K-16 38.26 0.8% K-8 48.09 2.3% K-17 50.68 3.9% K-9 54.14 0.6% K-18 62.53 0.7% Sophora flavescens 種子水分変動範囲 7.94%~11.95%、平均値 9.71% 純度 8.00% 未満の種子 1 粒、純度 8.00%~9.00% の種子 5 粒、および純度 6 粒９．００％〜１０．００％の純度を有し、４つの種子の純度は１０．００％〜１１．００％であり、２つの種子の透明度は１１．００％を超えていた（表１０）。 表 10 Sophora flavescens 種子のサンプル水分 サンプル番号 反復間のサンプル水分差 サンプル番号 反復間のサンプル水分差 K-1 11.95% 0.15% K-10 10.18% 0.11% K-2 8.94% 0.05% K-11 10.08% 0.17 % K -3 9.33% 0.16% K-12 8.98% 0.06% K-4 10.66% 0.06% K-13 9.31% 0.15% K-5 9.82% 0.07% K-14 8.77% 0.17% K-6 10.83% 0.04% K- 15 9.92% 0.13% K-7 9.96% 0.15% K-16 8.96% 0.03% K-8 7.94% 0.14% K-17 8.53% 0.18% K-9 11.02% 0.01% K-18 9.53% 0.08% ビター 発芽高麗人参種子サンプルの割合は 28.00% ～ 92.00% の範囲で、平均値は 59.43% でした。 そのうち、1 つの種子の発芽率は 30.00% 未満、4 つの種子の発芽率は 40.00% ～ 50.00%、4 つの種子の発芽率は 50.00% ～ 60.00%、6 つの種子の発芽率はは６０．００％から７０．００％の間であり、２部の発芽率は８０．００％から９０．００％の間であり、１部の発芽率は９０．００％を超えていた（表１１）。 表 11 Sophora flavescens 種子サンプルの発芽率 サンプル番号 発芽率 サンプル番号 発芽率 K-1 86.25% K-10 64.25% K-2 47.50% K-11 42.25% K-3 60.00% K-12 43.75% K -4 57.75% K-13 61.50% K-5 57.50% K-14 28.00% K-6 92.00% K-15 84.75% K-7 63.00% K-16 51.50% K-8 58.50% K-17 63.00% K -9 45.75 % K-18 62.50% 2.3.2 種子の品質分類 試験結果によると、Sophora flavescens 種子の品質分類は表 12 に示されています。 表 12 Sophora flavescens 種子の品質等級 発芽率 千粒重量 水分純度 1 ≥75.54% ≥54.15 g ≤8.71% ≥98.53% 2 59.43%~75.54% 47.35 g~54.15 g 8.71%~9.71% 96.16%～98.53% 3 43.32%～59.43% 40.55g～47.35g 9.71%～10.70% 93.80%～96.16%

T/SXZYC 008-2023 発売履歴

• 2023 T/SXZYC 008-2023 Sophora flavescens 種子の品質基準